流式细胞分析
细胞内细胞因子染色步骤

一、样本准备
1. 收集细胞,200目筛网过滤,收集滤液,300 g离心5 min,弃上清。
2. 向细胞中加入适量细胞染色buffer(或含1%BSA的PBS),用移液枪轻轻吹打细胞重悬。
二、细胞计数
用血球计数板或其他仪器对悬液进行计数后,调整细胞浓度约为1 × 107/mL。
三、设置实验分组
根据实验设计,设置实验分组,每管加入100μL细胞悬液。
实验分组 |
作用 |
阴性/空白对照 |
调节仪器电压 |
单染/单阳对照 |
调节补偿 |
同型对照 |
消除背景染色 |
FMO对照 |
确定设门的准确性 |
生物学对照 |
实验结果对比 |
实验组 |
实验结果 |
四、封闭Fc受体
封闭Fc受体能减少染色过程中的非特异性染色。
小鼠中,纯化的CD16/CD32单抗能和FcγRⅢ/Ⅱ结合,封闭非特异性染色,使阴性细胞的背景荧光降至未标记细胞的水平。加入0.5-1μg纯的抗小鼠CD16/32单克隆抗体,室温孵育10min。
对于人和大鼠,可直接使用过量的与荧光抗体相同来源和亚型的纯化Ig或者相同来源血清进行阻断,或者用商业化的Fc受体阻断剂。
五、细胞表面抗体孵育
根据实验设计,除空白对照外,对应的单染管、全染管加入相应的抗体5μL,混匀,4℃避光孵育30min。
六、固定破膜
1. 按照说明书稀释固定破膜液。
2. 每管加入1mL细胞染色buffer,300g离心5min,弃上清。
3. 加入100μL细胞染色buffer,重悬细胞。
4. 每管加入1mL的1× Fixation Working Solution,轻柔混匀,4℃避光孵育30min。
5. 600g离心5min,弃上清。
6. 每管加入2mL的1×Permeabilization Working Solution,轻柔混匀。
7. 600g离心5min,弃上清。
8. 重复(6)、(7)步一次。
七、胞内抗体孵育
1. 加入100μl 的1×Permeabilization Working Solution,重悬细胞。
2. 对应的单染管、全染管加入相应的抗体5μL,混匀。
3. 室温避光孵育30分钟。
4. 加入1×Permeabilization Working Solution,重悬细胞。
5. 600g离心5分钟,弃上清。
八、上机检测
1. 加入200μL细胞染色buffer,重悬细胞。
2. 调整仪器参数,上机检测。
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